대부분의 조류 종에 대해 정확한 성별 식별이 가능합니다.
다양한 조류 종에 대한 심층적인 유전자 검사.
8개의 주요 로키에 대한 평가
우리의 레이싱 비둘기 성능 DNA 테스트 서비스 분석 8가지 주요 유전자 마커 를 설정하여 비둘기의 경주 능력에 영향을 줍니다.
이러한 유전자를 이해함으로써 팬들은 다음과 같은 분야에서 정보에 입각한 결정을 내릴 수 있습니다. 번식, 훈련 및 경주 전략, 를 통해 미래 세대의 고성능 비둘기를 위한 더 강력한 기반을 구축했습니다.
| 유전자 마커 | 기본 특성 | 분자 메커니즘 및 전략적 인사이트 |
| LDHA | 지구력 및 신진대사 효율성 | 규제 당분해 속도 그리고 젖산 제거. 변종에 따라 비둘기의 다음 기능이 결정됩니다. 빠른 에너지 공급 대 지속적인 에너지 공급. |
| CRY1 | 내부 시계 및 방향 | 인코딩 크립토크롬 단백질, 에 영향을 미치는 내부 생체 시계와 빛에 의존하는 자기 인식. 정확성을 유지하는 데 중요 방향 안정성 장거리 비행 중. |
| DRD4 | 귀환 동기 부여 및 주의력 | 링크 도파민 수용체 활동. 비둘기의 주의력, 탐색 행동및 귀환 드라이브의 강도-속도와 일관성을 위해 필수적입니다. |
| F-KER | 깃털 품질 및 공기역학 | 깃털을 결정합니다. 각질 구조. 영향력 마찰 항력 깃털 날개와 구조적 안정성 악천후 조건에서. |
| MSTN | 근력 및 섬유질 유형 | 규제 미오스타틴 발현, 를 사용하여 근육 섬유 발달을 조절합니다. 고출력 G/G 유전자형은 단거리 스프린트. |
| LRP8 | 공간 기억 및 학습 | 관련 분야 시냅스 가소성 그리고 공간 학습 경로에 영향을 줍니다. 비둘기의 다음과 같은 능력에 직접적인 영향을 미칩니다. 비행 경로 외우기 그리고 새로운 환경에 적응하기. |
| GSR | 자기 인식 및 산화 방어 | (글루타치온-이황화 환원효소)와 연계되어 있습니다. 산화 방어 그리고 잠재적으로 자기 생체 나침반 장거리 탐색에 중요한 경로입니다. |
| CASK | 인지 및 운동 조정 | 다음에 관련 신경근 접합 형성 뇌의 감각 통합을 촉진합니다. 영향 비행 안정성, 감각 처리, 복잡한 비행 중에도 의사 결정을 내릴 수 있습니다. |
LDHA: 라마단, S., 미야케, T., 야마우라, J., & 이노우에-무라야마, M. (2018). LDHA 유전자는 레이싱 경기 중 비둘기의 생존 가능성과 관련이 있습니다. PLOS ONE, 13(5), e0195121.
CRY1: Dybus, A., Kulig, H., Yu, Y.-H., Lanckriet, R., Proskura, W., & Cheng, Y.-H. (2021). 귀환 비둘기의 CRY1 유전자 다형성 및 경주 성능. 동물, 11(9), 2568.
DRD4: 프로스쿠라, W. S., 쿠스토슈, J., 다이버스, A., 란크리에, R. (2015). 도파민 수용체 D4 유전자의 다형성은 비둘기 경주 성능과 관련이 있습니다. 동물 유전학, 46(5), 586-587.
MSTN: 다이버스, A., 프로스쿠라, W., 파울리나, E., & 노박, B. (2018). 미오스타틴(MSTN), $\알파 A$-글로빈 및 LDHB 유전자의 다형성과 비둘기의 경주 성능 간의 연관성. 베티나르니 메디나, 63(8), 390-394.
LRP8, GSR, CASK(통합 호밍/인지 유전자): 샤오, S.-Z., 외. (2019). 게놈 및 표현형 분석을 통해 비둘기의 귀환 능력의 근간이 되는 메커니즘이 밝혀졌습니다. 분자 생물학과 진화, 37(1), 134-143.
F-KER: 프로스쿠라, W., 루카스제비츠, A., 롭카-프르제코라사, K., 외. (2019). 깃털 케라틴의 Cys83Gly 아미노산 치환은 장거리 경주에서 비둘기 성능과 관련이 있습니다. 국제 분자 과학 저널, 20(2), 290.
SENO 보고서는 단순한 데이터 그 이상입니다. 과학적으로 검증된 로드맵 에서 번식 및 훈련 결정을 업그레이드합니다. 시행착오 에 정밀한 유전자 지도:
Bird 성별 테스트 DNA 분석을 사용하는 것은 새의 염색체에 있는 특정 유전자를 분석하여 수컷인지 암컷인지를 판별하는 신뢰할 수 있고 과학에 기반한 방법입니다.
일반적인 방법으로는 PCR(중합효소 연쇄 반응)과 유전자 염기서열 분석이 있습니다. PCR은 가장 널리 사용되는 방법으로, DNA 단편을 확인하여 성별을 식별하는 반면, 유전자 염기서열 분석은 희귀하거나 유전적으로 다양한 조류 종에 대해 매우 정확한 결과를 제공합니다.
이 방법은 모든 조류 종과 모든 연령대에 사용할 수 있습니다. 깃털, 혈액, 달걀 껍질 막과 같은 소량의 샘플만 필요하며 최대 99.9%의 정확도를 달성할 수 있습니다. DNA 조류 성별 테스트는 전 세계 조류 사육자, 환경 보호 프로젝트, 연구 기관에서 널리 사용되고 있습니다.
1. 샘플 수집
새에게서 작은 생물학적 샘플(보통 뿌리(모낭)가 붙어 있는 깃털 2~3개 또는 작은 혈액 한 방울)을 조심스럽게 채취합니다. 이 과정은 안전하고 간단하며 새에게 스트레스를 주지 않습니다.
2. 샘플 보내기
제공된 포장에 샘플을 넣고 단계별 배송 지침에 따라 실험실로 보내세요. 적절한 포장은 운송 중 샘플을 보호하는 데 도움이 됩니다.
3. DNA 추출
샘플을 받으면 실험실 전문가가 정확한 방법과 인증된 시약을 사용하여 신뢰할 수 있는 결과를 보장하기 위해 DNA를 추출합니다.
4. PCR 테스트
중합효소연쇄반응(PCR)을 사용하여 새의 DNA를 분석하며, 특히 새의 성염색체(Z와 W)에 있는 CHD 유전자에 초점을 맞춥니다. 이 유전자는 수컷(ZZ)과 암컷(ZW)에서 서로 다릅니다.
5. 결과 분석하기
겔 전기영동이나 실시간 PCR과 같은 고급 기술을 통해 새의 성별을 결정합니다:
수컷 새(ZZ): 하나의 DNA 밴드
암컷 새(ZW): 두 개의 뚜렷한 DNA 밴드
6. 결과 보기
새의 성별이 정확하게 표시된 명확하고 이해하기 쉬운 보고서를 이메일이나 인쇄물로 받아볼 수 있습니다.